Effects of salicylic acid and kinetin on some physiological, biochemical traits and the accumulation of cadmium in durum wheat

Document Type : Original Article

Authors

1 Department of Plant Production and Genetics, Faculty of Agriculture, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran

2 Department of Biology, Faculty of Science, Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran

Abstract

To study the effects of salicylic acid and kinetin on some physiological and biochemical traits as well as the accumulation of cadmium in durum wheat, a pot experiment was carried out using a factorial experiment based on a randomized complete block design with three replications during the 2022-2023 growing season. Cadmium treatments (0 and 20 mg Cd kg-1 soil (CdCl2)) and different concentrations of kinetin and salicylic acid (0, 50, and 75 μM, kinetin; and 200 and 400 μM, salicylic acid) were assigned in plots. Cadmium treatment significantly reduced stomatal conductance, photosynthesis, transpiration, chlorophyll index, and catalase activity. However, it increased ascorbate peroxidase activity, malondialdehyde concentration, electrolyte leakage, soluble carbohydrate content, and cadmium accumulation in root and flag leaf. Foliar application of kinetin and salicylic acid mitigated the adverse effects caused by cadmium stress on physiological and biochemical parameters significantly when root and flag leaf cadmium concentrations decreased compared to the cadmium treatment. Catalase and ascorbate peroxidase activity increased in response to salicylic acid and kinetin treatment. Hence, a decrease in lipid peroxidation and malondialdehyde concentrations was observed. The optimum hormone concentrations needed to exhibit a considerable increase in studied traits were 50 μM and 400 μM salicylic acid, particularly in cadmium treatments. Foliar application of kinetin alleviated symptoms of the cadmium treatments by enhancing the activities of antioxidant enzymes and photosynthetic properties compared with individual cadmium treatments. Overall, these findings showed that foliar application of kinetin and salicylic acid can be considered a strategy to enhance the performance of wheat cultivars in soil contaminated with cadmium.
 Introduction
Cadmium contamination of soil and food crops is one of the most serious environmental problems in recent years, and it has resulted from industrialization, wastewater irrigation, and extensive agricultural systems. High concentrations of cadmium in the soil can potentially threaten human health because it can be easily absorbed and accumulated in different parts of crops such as the root, stem, leaf, and grain. Finally, it can enter the food chain and enter the human body. Plants respond to the presence of cadmium in the soil. Cadmium influences morphological, physiological, biochemical, and structural processes and inhibits plant growth and crop production. Cadmium toxicity severely reduces the growth and yield traits of plants. Cadmium toxicity is caused by changes in the concentration of nutrients in roots and leaves, the formation of reactive oxygen species, and a decrease in transpiration, photosynthesis rate, and chlorophyll concentration, which subsequently reduces crop productivity. Plant hormones, including salicylic acid and kinetin, are crucial in responding to cadmium toxicity. Exogenous treatment with salicylic acid and kinetin alleviates the effects of cadmium toxicity in plants exposed to cadmium. This study aimed to explore optimum hormone concentrations in enhancing cadmium tolerance at wheat plants' physiological and biochemical levels.
Materials and Methods
To study the effects of salicylic acid and kinetin on some physiological and biochemical traits as well as the accumulation of cadmium in roots and leaves of durum wheat, a pot experiment was carried out using a factorial experiment based on a randomized complete block design with three replications during the 2022-2023 growing season. Cadmium treatments (0 and 20 mg Cd kg-1 soil (CdCl2)) and different concentrations of kinetin and salicylic acid (0, 50, and 75 μM, kinetin; and 200 and 400 μM, salicylic acid) were assigned in plots. The study site was located at the research farm of Shahid Chamran University of Ahvaz, Iran. At first, the soil needed for the experiment was weighed. The content of Cd2+ (mg kg-1) in the soil was calculated according to the dry weight of the soil, and CdCl2 was sprayed close to the soil surface in the form of the solution. Cadmium was thoroughly mixed with the soil placed into each pot. Hormonal treatments were applied at the beginning of stem elongation (stage 33 of the BBCH scale). The plants were grown under natural environmental conditions. Plants were watered with sufficient water until the end of the experiment. The data regarding stomatal conductance, photosynthesis rate, transpiration, chlorophyll index, catalase and ascorbate peroxidase activity, malondialdehyde concentration, soluble carbohydrate content, and cadmium accumulation in roots and flag leaf was recorded. The transfer factor was computed as the ratio of the cadmium concentration in leaves and roots.
 
Results and Discussion
The results showed a significant difference among cadmium treatments regarding the most studied traits. Cadmium treatment significantly reduced stomatal conductance, photosynthesis, transpiration, chlorophyll index, and catalase activity. However, it increased ascorbate peroxidase activity, malondialdehyde concentration, electrolyte leakage, soluble carbohydrate content, and cadmium accumulation in root and flag leaf. Foliar application of kinetin and salicylic acid mitigated the adverse effects caused by cadmium stress on physiological and biochemical parameters significantly when root and flag leaf cadmium concentrations decreased compared to the cadmium treatment. Cadmium caused a significant increase in flag leaf cadmium concentrations by 31 times compared to control, while the increase in flag leaf cadmium concentrations at 50 and 75 μM, kinetin; and 200 and 400 μM, salicylic acid treatments were by 18, 19, 17 and 20 times, respectively, when compared to cadmium-deficient plants. Catalase and ascorbate peroxidase activity increased in response to salicylic acid and kinetin treatment. Hence, a decrease in lipid peroxidation and malondialdehyde concentrations was observed. Hormonal treatments of 50 and 75 μM, kinetin, and 200 and 400 μM, salicylic acid reduced transfer factor by 21, 24, 24 and 27 %, respectively, compared to hormone-deficient plants.
 
Conclusion
Overall, the results of this experiment showed that the optimum hormone concentrations needed to exhibit a considerable increase in studied traits were 50 μM kinetin and 400 μM salicylic acid; remarkably, in cadmium treatments, foliar application of kinetin and salicylic acid alleviated symptoms of the cadmium treatments by enhancing the activity of antioxidant enzymes and photosynthetic properties compared with individual cadmium treatment. Moreover, foliar application of kinetin and salicylic acid can be considered a strategy to enhance the performance of wheat cultivars in soil contaminated with cadmium.

Keywords

Main Subjects


مقدمه

آلودگی ناشی از فلزات سنگین و عدم تجزیه‌پذیری آن­ها در اراضی کشاورزی، از مهم‌ترین مشکلات اکولوژیک در سراسر جهان است و فلزات سنگین را به یکی از خطرناک‌ترین گروه آلاینده‌های زیست‌محیطی تبدیل کرده است (Vodyanitskii et al., 2016). با جذب فلزات سنگین، عملکرد و کیفیت گیاهان کاهش یافته و تجمع آن در محصولات کشاورزی می‌تواند با زنجیرة غذایی در بدن انسان انباشت ­شود و سبب به‌خطرافتادن سلامت و امنیت غذایی شود. در بین فلزات سنگین، کادمیوم از اهمیت ویژه‌ای برخوردار است، زیرا به‌راحتی توسط ریشه گیاه جذب شده و با اختلال در جذب و انتقال مواد مغذی و همچنین اختلال در متابولیسم و رشد گیاه سبب سمیت کادمیوم در گیاه شده و در غلظت‌های بالا در محصولات کشاورزی تجمع می­یابد (Qin et al., 2020). امروزه کادمیوم در اثر مصرف بی­رویة کودهای فسفاته در اراضی کشاورزی به ویژه گندم در خاک و به دنبال آن در اندام­هوایی گیاه و دانه­ها انباشت می­شود. قابلیت دسترسی زیستی به فلزات سنگین خاص گیاهان بوده و این امر ضرورت کاهش دسترسی زیستی به فلزات سنگین را اجتناب ناپذیر می­سازد، زیرا یون­های محلول کادمیوم به سهولت با مسیرهای جذب آپوپلاستی و سمپلاستی جذب می­شوند و با کمک جریان تعرق در درون گیاه حرکت می­کنند (Ismael et al., 2019).

گندم دوروم (Triticum turgidum L. var. durum) یکی از مهم­ترین گونه­های زراعی از خانودۀ گرامینه است که در صورت رشد در خاک­های آلوده به مقادیر بالای کادمیوم، تمایل به انباشت غلظت­های نسبتاً بالای این فلز سمّی در بافت­های گیاهی دارد (Vergine et al., 2017). کادمیوم، بسیاری از واکنش­های گیاه را تحت تأثیر قرار می­دهد و سبب تغییر هدایت روزنه‌ای، رنگدانه‌های فتوسنتزی، محتوای پروتئین، فعالیت چرخۀ کالوین و آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان می‌شود (Paunov et al., 2018; Arivazhagan & Sharavanan, 2015). کادمیوم با کانال­های کلسیمی وارد سلول­های محافظ می­شود و از این راه سبب بسته شدن روزنه­ها و کاهش هدایت روزنه‌‌ای می­شود (Chen et a., 2018). سیستم فتوسنتزی گیاهان عالی به سمیت فلزات سنگین حساس است (Dobrikova & Apostolova, 2019). پژوهش‌ها نشان دادند با افزایش غلظت کادمیوم، تولید گونه­های اکسیژن واکنش­گر و آسیب ناشی از تنش اکسیداتیو و به دنبال آن مهار سرعت فتوسنتز افزایش می­یابد (Bayçu et al., 2018; Arivazhagan & Sharavanan, 2015).

انباشت کادمیوم در دانة گندم یکی از نگرانی­های مهم در بخش صنایع غذایی است. کادمیوم موجود در مواد غذایی تهدیدی جدی برای سلامت مصرف کنندگان محسوب می­شود، بنابراین سازمان­های تجارت جهانی خواستار کاهش غلظت کادمیوم به پائین­تر از حد مجاز در محصولات کشاورزی عرضه شده در بازارهای بین المللی هستند. حد مجاز کادمیوم برای دانه گندم حدود 2/0 میلی­گرم کادمیوم بر کیلوگرم تعیین شده است. بنابراین شناسایی سازوکارهای کنترل­ انباشت کادمیوم در بخش­های تغذیه­ای محصولات کشاورزی از اهمیت ویژه­ای برخوردار است. در این زمینه پژوهش‌های زیادی بر روی ارقام گندم نان انجام شده، ولی ارقام گندم دوروم در این بررسی­ها کمتر مورد توجه پژوهشگران قرار گرفته است (Sabella et al., 2022). بنابراین، نیاز به توسعة ارقام گندم دوروم دارای انباشت پائین کادمیوم و عملیات مدیریتی مناسب مزرعه­ای در جهت کاهش انتقال کادمیوم از خاک به گیاه است.

عوامل متعددی از جمله کاربرد هورمون­های گیاهی، انتقال و انباشت کادمیوم را در سیستم­های خاک و گیاه تحت تأثیر قرار می­دهند. سالیسیلیک اسید یک مولکول پیام رسان هورمونی طبیعی است که برای رشد و نمو گیاه و مشارکت در واکنش به تنش­های غیرزیستی مانند واکنش گیاه ناشی از فلزات سنگین ضروری است (Subašić et al., 2022). این ترکیب نقش مهمی در رشد گیاه و جذب یون­ها داشته و بیوسنتز اتیلن و حرکت روزنه­ای را تحت تأثیر قرار می­دهد. علاوه بر این، سطح رنگدانه‌های فتوسنتزی و سرعت فتوسنتز را افزایش می‌دهد و فعالیت برخی از آنزیم‌های مهم را بهبود می­بخشد (Kumudini et al., 2019; Chavoushi et al., 2020). پژوهش‌ها نشان دادند سالیسیلیک اسید می‌تواند آسیب‌های ناشی از کادمیوم را در انواع گونه‌های گیاهی مانند گندم (Zulfiqar et al., 2024) و برنج (Pan et al., 2021) کاهش دهد. کاهش سمیت کادمیوم توسط فرآیندهای مختلفی از جمله میانجیگری در مسیر پیام­رسان مسئول جلوگیری از سمیت کادمیوم (برای مثال کلاته کردن و انباشت)، تحریک تولید ترکیبات محافظ، برهم­کنش با سایر هورمون‌های گیاهی، و القای سازوکارهای دفاعی آنتی اکسیدانی انجام می­شود (Sharma et al., 2020). پژوهش‌ها نشان دادند در حضور کادمیوم، کاربرد سالیسیلیک اسید تأثیر مثبتی بر رشد گونه‌های مختلف گیاهی داشته است (Wang et al., 2021). همچنین کینتین هورمونی ضروری برای گیاهان است و کاربرد آن منجر به کاهش ظرفیت دیوارۀ سلولی برای اتصال با کادمیوم شده و ورود آن به سلول را محدود می­کند. علاوه بر این، سطوح رونوشت ژن‌های مرتبط با جذب و انتقال کادمیوم از ریشه به ساقه را کاهش داده و از سوی دیگر سطوح رونوشت ژن‌های دخیل در خروج آن از سلول‌ و انباشت آن در واکوئل را تنظیم کرده و در نتیجه منجر به کاهش تجمع کادمیوم در گیاه می­شود (Guo et al., 2024). از این رو، کاربر آن در افزایش تحمل به تنش گیاه مؤثر است (Jameson, 2023).

در این پژوهش، تأثیر محلول پاشی سالیسیلیک اسید و کینتین به عنوان عوامل کاهنـدۀ آثار زیـان­بـار کادمیوم و فراهمی زیستی و جذب کادمیوم توسط ریشه و انتقال به اندام هوایی، بر بهبود بعضی فاکتورهای فیزیولوژیک، بیوشیمیایی و انباشت کادمیوم در گندم دوروم در شرایط مواجهه با فلز سنگین کادمیوم مورد بررسی قرار گرفت.

مواد و روش­ها

در این پژوهش، گندم دوروم رقم بهرنگ تحت تنش کادمیوم و سطوح مختلف سالیسیلیک اسید و کینتین قرار گرفت. این پژوهش‌ به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی در سه تکرار در گلخانۀ تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه شهید چمران در سال زراعی 1402- 1401 اجرا شد. فاکتور اول سطوح کادمیوم شامل صفر و 20 میلی‌گرم کلرید کادمیوم بر کیلوگرم خاک (Larki et al., 2015a) و فاکتور دوم سطوح هورمونی شامل صفر، 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین در نظر گرفته شد.

غلظت کادمیوم موجود در خاک مورد آزمایش 5/0 میلی‌گرم بر کیلوگرم خاک بود. غلظت کادمیوم مورد نظر با توجه ‌به غلظت مجاز کادمیوم در خاک انتخاب شد، به‌طوری‌که غلظت 5/0 میلی‌گرم کادمیوم بر کیلوگرم خاک برای شاهد و غلظت 20 میلی‌گرم کلرید کادمیوم بر کیلوگرم برای تیمار کادمیوم در نظر گرفته شد. غلظت مجاز کادمیوم از 1 تا 5 میلی‌گرم در هر کیلوگرم خاک است (Cariny, 1995). برای اعمال آلودگی کادمیوم در اواسط مهرماه، محلول نمک کلرید کادمیوم به جز تیمار شاهد به طور کامل با خاک مخلوط شد. ابتدا مقدار لازم نمک کلرید کادمیوم (CdCl2.H2O) برای آلودگی وزن مشخصی از خاک محاسبه شد. سپس وزن محاسبه شدۀ نمک به صورت محلول­ تهیه شد و توسط محلول­پاش 20 لیتری بر روی خاک مورد بررسی به طور یکنواخت محلول­پاشی و به طور کامل با خاک مخلوط شد تا یک پیش‌ماده همگن به دست آمد. سپس، خاک آلوده تا رطوبت اشباع آبیاری و به مدت یک ماه رها شد تا برهم­کنش­های کادمیوم و خاک تکوین یافته و شرایط آلودگی به کادمیوم تاحد امکان طبیعی­ترشود (Larki et al., 2015a).

 با توجه به نتایج آزمون خاک (جدول 1) و بر اساس حدود بحرانی و مطلوب عناصر غذایی، نیاز کودی گیاه برطرف شد. کود سولفات پتاسیم در مقادیر محاسبه شده، به هنگام کاشت و کود اوره بر اساس مقادیر محاسبه شده برای هر گلدان به‌صورت یک دوم به هنگام کاشت و باقی‌مانده به‌صورت سرک در ابتدای مرحلۀ ساقه دهی به خاک اضافه شد.

 

 

جدول 1- ویژگی‌های فیزیکی و شیمیایی نمونه خاک مورد استفاده در آزمایش

Table 1- The results of physical and chemical analysis of soil

Soil texture

EC (dSm-1)

pH

Cd

(mg kg-1)

N (%)

P

(mg kg-1)

K

(mg kg-1)

Organic matter (%)

Silty loam

3.21

7.5

0.5

0.038

11.8

135

0.53

 

بذرهای هم اندازه پس از ضدعفونی توسط قارچ­کش ویتاواکس (غلظت یک در هزار) در گلدان­های پلاستیکی (30 سانتی­متر قطر و ارتفاع) و در عمق سه سانتی­متری کشت شدند. هر تکرار شامل 10 تیمار و بنابراین آزمایش متشکل از 30 واحد آزمایشی و هر واحد آزمایشی شامل دو عدد گلدان بود و در مجموع 60 عدد گلدان مورد استفاده قرار گرفت و در کف هر گلدان مقادیری سنگ‌ریزه به‌عنوان زهکش اضافه شد. در هر گلدان 20 عدد بذر ضدعفونی شده کشت شد. پس از استقرار گیاهچه­ها، با تنک کردن تعداد بوته­ها­ به پنج عدد در هر گلدان کاهش یافت و گلدان­ها به هوای آزاد و در شرایط نوری طبیعی منتقل شدند. اولین آبیاری بلافاصله پس از کشت انجام شد. آبیاری بر اساس نیاز گیاه تا پایان آزمایش انجام شد. تیمار هورمون­های سالیسیلیک اسید و کینتین در مرحلۀ ساقه دهی (مرحلة 33 بر اساس مقیاس BBCH) به صورت اسپری برگی اعمال شد.

شاخص کلروفیل با دستگاه کلروفیل­متر (SPAD-502)، سرعت فتوسنتز و تعرق توسط دستگاه تحلیل­گر مادون قرمز (IRGA, model LCA4, ADC Biosientific Ltd. Hoddeston,UK) و هدایت روزنه‌ای به وسیلۀ دستگاه پرومتر AP4 Delta-T (Delta-T Devices Ltd, Burwell, UK) بین ساعت 10 صبح الی 13 بعد از ظهر بر روی برگ پرچم توسعه یافته (مرحلة 59 بر اساس مقیاس BBCH) اندازه­گیری شد. اندازه­گیری فعالیت آنزیم کاتالاز توسط روش بیرز و سیزر (Bears & Sizer, 1952)، فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز توسط روش اسمیت و همکاران (Smith et al., 1988)، غلظت مالون دی آلدهید برگ توسط روش استوارت و بیولی (Stewart & Beweley, 1980) و غلظت قندهای محلول با روش اشلیگل (Sheligl, 1986) انجام شد. اندازه‌گیری فاکتورهای مورد نظر بر روی سه بوته از هر واحد آزمایشی انجام شد. غلظت کادمیوم ریشه و برگ به­وسیلة دستگاه طیف­سنج جذب اتمی (6300Shimadzu AA ) اندازه­گیری شد.

فاکتور انتقـال کادمیوم، به عنوان معیاری از توانـایی گیـاه بـرای انتقـال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی از رابطــۀ زیر تعیــین شد (Ghosh & Singh, 2005). رابطه (1):

 

تجزیه واریانس داده‌ها توسط نرم افزارآماری SAS نسخۀ 1/9 و مقایسه میانگین­ها به روش آزمون دانکن در سطح احتمال 5 درصد صورت گرفت. برای رسم نمودارها از نرم افزار Excel استفاده شد.

 

نتایج و بحث

هدایت روزنه­ای

تجزیه واریانس داده‌ها نشان داد بین سطوح کادمیوم و هورمون از نظر هدایت روزنه­ای در سطح احتمال یک درصد تفاوت معنی­داری وجود داشت (جدول 2). هدایت روزنه­ای برگ پرچم در شرایط حضور کادمیوم در مقایسه با شاهد (حدود 66 درصد) کاهش یافت. کاربرد هر دو هورمون منجر به بهبود هدایت روزنه­ای به ویژه در سطح 75 میکرومولار کینتین (20 درصد) شد (جدول 3).

هدایت روزنه­ای یکی از مهم­ترین عوامل روزنه­ای محدود کنندة فتوسنتز است (Rahnama et al., 2010). به نظر می­رسد محدودیت جذب آب ناشی از تنش کادمیوم با تشکیل اسیدآبسیزیک و سایر ملکول­های پیام­رسان و انتقال آن به برگ­ها سبب کاهش هدایت روزنه­ای می­شود. مطابق با نتایج این پژوهش، Larki et al. (2015a) نیز گزارش دادند هـدایت روزنـه­ای گنـدم در شـــرایط حضـــور کـــادمیم در مقایســـه بـــا شـــاهد (حدود 57 درصد) کاهش یافـت. همچنین کاهش هدایت روزنه­ای در شرایط کاربرد کادمیوم در گیاه ماش (Wahid et al., 2008) و نخود (Popova et al., 2009) نیز مشاهده شده است. پراکسید هیدروژن تولیدی نیز سبب تشدید واکنش اسید آبسیزیک می­شود و منجر به بسته شدن روزنه با فعال­سازی کانال­های کلسیم می­شود (Schutzendubel & Polle, 2002). به عبارت دیگر، تنظیم هدررفت آب با بسته­شدن روزنه­ها، به­عنوان یک سازوکار تحمل به تنش محسوب می­شود (Rahnama et al., 2010). از سوی دیگر، کاهش تعداد و اندازة روزنه­ها در تیمار کادمیوم ممکن است از دلایل دیگر کاهش هدایت روزنه­ای در تیمار کادمیوم باشد (Zaid et al., 2023). یکی از راهبردهای مهم افزایش هدایت روزنه­ای استفاده از هورمون­های گیاهی برای مقابله با آثار منفی تنش فلزات سنگین در گیاهان در حال رشد و افزایش زیست توده اندام هوایی است. سالیسیلیک اسید و کینتین به عنوان هورمون­های گیاهی مهم در تنظیم هدایت روزنه­ای، با تأثیر بر باز و بسته شدن روزنه­ها نقش مهمی در تنظیم اسمزی گیاه دارند (Guo et al., 2016; Zaid et al., 2023). در این پژوهش، کاربرد هورمون کینتین به ویژه در سطح 75 میکرو‌مولار به طور مؤثرتری قادر به بهبود مقادیر هدایت روزنه­ای در شرایط حضور کادمیوم بود (جدول 3). نقش تعدیل­کنندگی کینتین و سالیسیلیک اسید بر بهبود هدایت روزنه­ای در پژوهش‌های پیشین نیز به اثبات رسیده است (Tassi, 2008; Zaid et al., 2023).

 

سرعت فتوسنتز

بین سطوح کادمیوم و هورمون از نظر سرعت فتوسنتز به ترتیب در سطح احتمال یک و پنج درصد تفاوت معنی­داری وجود داشت (جدول 2). سرعت فتوسنتز در شرایط حضور کادمیوم کم­ترین میزان را دارا بود و در این شرایط به میزان 43 درصد کاهش یافت (جدول 3). به عبارت دیگر، مطابق با نتایج هدایت روزنه­ای، گیاه با بستن نسبی روزنه­ها و کاهش هدایت روزنه­ای منجر به کاهش تبادلات گازی و سرعت فتوسنتز شد. وجود کادمیوم در محیط رشــد گیاه سبب کاهش رنگدانه­های فتوسنتزی گیاه می­گردد (Paunov et al., 2018). به عبارتی، غلظت­ بالای کادمیوم در گیاهان سـبب ایجاد مشکل در رشـد گیاه می‌شود که آسیب به اندام فتوسنتزی و کاهش مقدار کلروفیل و رشـــد و در نهایت مرگ گیــاه را بــه دنبــال خواهد داشت. آثار نامطلوب کادمیوم بر سرعت فتوسنتز ممکن است علّت اصلی کاهش رشد در حضور کادمیوم باشد (Zulfiqar et al., 2024).

کاربرد هر دو هورمون منجر به بهبود سرعت فتوسنتز شد به گونه­ای که مقادیر این افزایش در سطح 50 و 75 میکرومولار کینتین و 200 و 400 میکرو­مولار سالیسیلیک اسید به ترتیب برابر با 26، 54، 40 و 26 درصد بود (جدول 3). احتمالاً با اعمال تیمارهای هورمونی، یکی از دلایل افزایش بهبود سرعت فتوسنتز افزایش هدایت روزنه­ای در شرایط حضور و عدم حضور کادمیوم بوده است. تیمار سیتوکینین با افزایش کارایی دستگاه فتوسنتزی سبب مصرف دی اکسیدکربن زیر روزنه­ای ممانعت از تنش اکسیداتیو شده و به دنبال آن سبب افزایش هدایت روزنه­ای می­شود. از سوی دیگر، سالیسیلیک اسید در غلظت‌های پائین، پاسخ‌های متابولیک را تقویت کرده و بر فاکتورهای فتوسنتزی و روابط آبی گیاه تأثیر می‌گذارد (Akbari et al., 2013). همچنین با تقویت بیوسنتز کلروفیل و یا تثبیت مولکول­های کلروفیل منجر به افزایش غلظت کلروفیل و فتوسنتز برگ شود (Kumudini et al., 2019). این هورمون همچنین با توزیع مناسب پتاسیم، سمیت کادمیوم را کاهش می‌دهد (Drazic et al., 2005) و با افزایش محتوای کلروفیل و تأثیر بر فعالیت آنزیم فتوسنتزی به عنوان کاهندۀ اثر بازدارندگی کادمیوم بر فتوسنتز و رشد شناخته شده است ((Chavoushi et al., 2020.

 

تعرق

تعرق تحت تأثیر سطوح کادمیوم و غلظت هورمون­ قرار گرفت (جدول 2). بالاترین میزان تعرق (95/2 میلی‌مول بر متر مربع بر ثانیه) در شرایط شاهد و کمترین آن (51/1 میلی­مول بر متر مربع بر ثانیه) در حضور کادمیوم به دست آمد، به عبارتی تعرق با کاهش 49 درصدی روبرو شد. همچنین بالاترین میزان تعرق مربوط به تیمارهای هورمونی و کمترین آن به تیمار عدم کاربرد هورمون اختصاص داشت (جدول 3). گفته می­شود که افزایش غلظت کادمیوم در محیط رشد گیاه منجر به کاهش قابل توجه سطح برگ می­شود که این امر یکی از عوامل کاهش سرعت فتوسنتز و تعرق است (Kaznina et al., 2014). در پژوهشی دیگر کاهش تعرق سویا به سمیّت کادمیوم وارد شده به برگ و کاهش قطر آوندهای چوبی نسبت داده شده است (Miladinova et al., 2014). مطابق با نتایج هدایت روزنه­ای، کاربرد هر دو هورمون به طور متفاوتی منجر به بهبود سرعت تعرق برگ پرچم به ویژه در سطح 75 میکرومولار کینتین شد (جدول 3). کاربرد هورمون­های گیاهی مانند سیتوکینین و سالیسیلیک اسید با بازیافت محتوای پتاسیم در برگ‌ها و تأثیر بر باز شدن روزنه سبب افزایش تعرق گیاه در حضور کادمیوم می­شوند (Guo et al., 2016). افزایش میزان تعرق و هدایت روزنه­ای در واکنش به سالیسیلیک اسید در ذرت و سویا نیز گزارش شده است و علت آن به استفاده از دی اکسید کربن وارده به برگ و سرعت بالای فتوسنتز نسبت داده شده است (Khan et al., 2003).

 

جدول 2- میانگین مربعات آثار سالیسیلیک اسید و کینتین بر صفات فیزیولوژیک، بیوشیمیایی و تجمع کادمیوم در گندم دوروم

Table 2- Mean squares of effects of salicylic acid and kinetin on physiological, biochemical traits and the accumulation of cadmium in durum wheat

Means of squares (MS)

Transfer factor

Leaf cadmium concentrations

Root cadmium concentrations

Carbohydrate  concentration

Malondialdehyde  concentration

Ascorbat peroxidase activity

Catalase

activity

Chlorophyll index

Transpiration

Photosynthetic rate

Stomatal conductance

Df

S.O.V.

0.014 **

1.14 ns

19.5 *

21 *

0.0012 ns

0.0002 ns

1076 **

11.5 ns

1.05 ns

0.977 **

8708 ns

2

Block

0.0006ns

1298**

19441**

5410**

0.118**

0.200**

49694**

2265**

281**

15.55**

1360218**

1

Cadmium levels (A)

0.0074 *

20.4 **

35.2 **

150 **

0.012 **

0.018 **

1978 **

141 **

18.1**

0.34 *

1697 **

4

Hormone levels (B)

0.0019 ns

17.6 **

28.6**

6.3 ns

0.0053 *

0.0044 **

1013 **

20.76 ns

0.39 ns

0.15 ns

2971 ns

4

A  ×B

0.0029

0.49

7.24

7.24

0.0012

0.00079

8.7

11.86

0.45

0.082

3771

18

Eab

20.73

10.09

10.03

3.47

14.83

3.57

4.22

8.58

5.98

12.88

14.46

-

C.V (%)

ns: فاقد تفاوت آماری معنی دار، * و ** به ترتیب معنی دار در سطح 5 و 1 درصد

ns: not significant; *and ** significant at 5% and 1% probability levels, respectively

 

جدول 3- مقایسه میانگین صفات فیزیولوژیک و بیوشیمیایی گندم دوروم تحت‌تأثیر سطوح مختلف کادمیوم و هورمون

Table 3- Mean comparison for physiological and biochemical traits of durum wheat under different levels of cadmium and hormone

Transfer

factor

Carbohydrate  concentration

Chlorophyll index

Transpiration

Photosynthetic rate

Stomatal conductance

Treatments

-

mg g-1 DW

-

µmol m-2. s-1

µmol m-2. s-1

mmol m-2. s-1

 

 

 

 

 

 

Cadmium levels

0.27 a

65.5 b

48.8 a

2.95 a

14.32 a

634 a

Control

0.26 a

92.3 a

31.43 b

1.51 b

8.19 a

212 b

20 mg kg-1

 

 

 

 

 

 

Hormone levels

0.33 a

72.9 c

33.9 d

1.9 b

8.7 d

394 b

Control

0.26 b

76.2 bc

39.8 b

2.2 a

11.0 c

425 ab

50 μM Kinetin

0.25 b

79.1 b

46.1 a

2.5 a

13.4 a

474 a

75 μM Kinetin

0.25 b

80.1b

37.3cd

2.3a

12.2b

432a

200 μM Salicylic acid

0.24 b

86.3 a

43.5 ab

2.2 a

11.0 c

398 b

400 μM Salicylic acid

*میانگین­های دارای حروف مشترک برای هر صفت و هر فاکتور آزمایشی توسط آزمون دانکن در سطح احتمال 5 درصد معنی­دار نیستند.

Means followed by the same letters for each trait and each experimental factor using Dunkan test at 5% probability level did not differ significantly

 

شاخص کلروفیل

تنها آثار اصلی سطوح کادمیوم و هورمون بر شاخص کلروفیل در سطح احتمال یک درصد معنی دار بود (جدول 2). میزان سبزینگی یا شاخص کلروفیل به عنوان برآوردی از غلظت کلروفیل در حضور کادمیوم به طور معنی­داری کاهش یافت، در حالی­که میزان آن با کاربرد هر دو منبع هورمونی در هر دو سطح بهبود یافت. بالاترین میزان سبزینگی (8/48) در شرایط شاهد و کمترین آن (4/31) در حضور کادمیوم به دست آمد. همچنین بالاترین میزان شاخص کلروفیل (1/46) مربوط به تیمار 75 میکرو­مولار کینتین و کمترین آن (9/33) به تیمار عدم کاربرد هورمون اختصاص داشت و با کاهش 36 درصدی روبرو شد (جدول 3). به عبارتی کاهش میزان شاخص کلروفیل در حضور کادمیوم با تأثیر هورمون‌های سالیسیلیک اسید و کینتین بهبود یافت به گونه­ای که کاربرد 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین به ترتیب سبب افزایش 17، 36، 10 و 28 درصدی مقادیر شاخص کلروفیل در مقایسه با شرایط شاهد شد (جدول 3).

کادمیوم سبب تجزیه کلروفیل و ممانعت از بیوسنتز آن می­شود و از این روش می­تواند کارایی فتوسنتزی و سرعت جذب دی اکسید کربن را کاهش دهد (Zhang et al., 2020) و مطابق با نتایج سایر پژوهش‌ها، تیمار هورمونی مانند سالیسیلیک اسید آثار نامطلوب اعمال شده توسط کادمیوم را بر مقدار شاخص کلروفیل کاهش داد (Kumudini et al., 2019). در حضور کادمیوم افزایش مقادیر کلروفیل با تیمار هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین در پژوهش‌های قبلی گزارش شده است (Khalil et al., 2021).

 

غلظت کربوهیدرات‌های محلول

غلظت کربوهیدرات‌های محلول در سطح احتمال یک درصد تحت تأثیر سطوح کادمیوم و هورمون قرار گرفت، ولی برهم­کنش سطوح کادمیوم و هورمون غیر معنی­دار بود (جدول 2). تیمار کادمیوم سبب افزایش 40 درصدی غلظت کربوهیدرات‌های محلول در مقایسه با شرایط بدون کادمیوم شد به گونه­ای که بالاترین غلظت کربوهیدرات‌های محلول (3/92 میلی گرم بر گرم) در تیمار کادمیوم و کمترین مقدار آن (5/65) در تیمار شاهد و عدم حضور کادمیوم مشاهده شد (جدول 3). کاربرد هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین سبب افزایش مقادیر کربوهیدرات‌های محلول شد به گونه­ای که بیشترین غلظت آن (4/86 میلی­گرم بر گرم) در تیمار 75 میلی‌مولار کینتین و کمترین آن در تیمار شاهد (9/72 میلی گرم بر گرم) مشاهده شد و بین تیمارهای 50 میکرومولار کینتین و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید از نظر غلظت قندهای محلول برگ تفاوت معنی‌داری وجود نداشت (جدول 3). با وجود این، در حضور یا عدم حضور کادمیوم روند غلظت قندهای محلول برگ افزایشی بود و بیشترین افزایش در غلظت 75 میکرومولار کینتین مشاهده شد.

گفته می­شود کادمیوم با کاهش انتقال آب و سرعت تعرق برگ و اختلال در آنزیم‌های کلیدی چندین مسیر متابولیسمی مانند مسیر متابولیسم قند سبب افزایش قندهای احیاکننده می­شود (Behtash et al., 2010). وجود کادمیوم ممکن است سبب آسیب به متابولیسم کربوهیدرات‌ها و اسیدهای آمینه شود. همچنین تصور می‌شود که کاهش کلروفیل در گیاه گلرنگ تیمار شده با کادمیوم سبب کاهش فتوسنتز و در نتیجه کاهش سنتز قندهای نامحلول مانند نشاسته می‌شود (Soltani et al., 2006).

 

فعالیت آنزیم کاتالاز

آثار اصلی سطوح کادمیوم و هورمون­ و برهم­کنش کادمیوم و هورمون بر فعالیت آنزیم کاتالاز برگ در سطح آماری یک درصد معنی‌دار بود (جدول 2). نتایج برهم­کنش کادمیوم و هورمون حاکی از آن بود که فعالیت آنزیم کاتالاز در شرایط حضور کادمیوم و سطوح مختلف هورمون به طور متفاوتی کاهش یافت. در شرایط عدم حضور کادمیوم، سطوح مختلف هر دو هورمون سبب افزایش فعالیت آنزیم کاتالاز شد. کاربرد کادمیوم در تیمار شاهد سبب کاهش فعالیت کاتالاز (16 درصد کاهش) شد، با این حال، سطوح مختلف هورمونی به طور معنی‌داری فعالیت این آنزیم را در حضور کادمیوم بهبود بخشیدند، به گونه­ای که در تیمارهای هورمونی مقادیر کاهش فعالیت کاتالاز در حضور کادمیوم به مراتب کمتر از مقادیر کاهش آن در تیمار شاهد بود. مقادیر این کاهش در تیمارهای 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین و 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید به ترتیب برابر با 12، 7، 12 و 7 درصد بود و در بین تیمارهای هورمونی تیمار 400 میلی‌مولار سالیسیلیک اسید و 75 میکرو‌مولار کینتین در حضور کادمیوم با کمترین درصد کاهش و بهبود فعالیت این آنزیم دارای کارایی بهتری بودند (شکل 1). به هر روی، در شرایط کاربرد کادمیوم، بیشترین میزان آنزیم کاتالاز برگ نیز در تیمار400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 75 میکرومولار کینتین و کمترین میزان آنزیم کاتالاز برگ در تیمار شاهد مشاهده شد. به‌طورکلی تأثیر تیمارهای هورمونی بر فعالیت کاتالاز برگ در مقایسه با شاهد در حضور یا عدم حضور کادمیوم روند افزایشی داشت.

شکل 1- مقایسه میانگین فعالیت کاتالاز گندم دوروم تحت سطوح مختلف کادمیوم و کاربرد هورمون‌ سالیسیلیک اسید و کینتین. مقادیر میانگین سه تکرار می باشد. حروف غیر مشترک بیانگر تفاوت معنی دار در سطح 5 درصد با استفاده از آزمون دانکن می باشد

Figure 1- Mean comparison for catalase activity of durum wheat under different cadmium levels and foliar application of salicylic acid and kinetin hormones. Values are the mean of three replicates. Different letters represent significant difference using Dunkan test at 5% probability level.

پژوهش‌های متعددی در زمینـۀ تأثیر تنظیم کننده­های رشد بر فعالیـت آنـزیم کاتالاز وجود دارد. گـزارش شده است تیمارهـای اسید سالیسیلیک نسـبت بـه شـاهد میـزان فعالیـت آنـزیم کاتـالاز را افزایش دادند (Zulfiqar et al., 2024). باتوجه به این­که فعالیت آنزیم کاتالاز تحت شرایط تنش افزایش می­یابد، با این حال نتایج برخی پژوهش‌ها نشان دادند مواجهه با کادمیوم فعالیت کاتالاز برگ را به شدت کاهش داد، و این اثر به طور قابل توجهی با کاربرد سالیسیلیک اسید تغییر یافت (Lu et al., 2018). در حضور کادمیوم افزایش فعالیت کاتالاز با تیمار هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین در پژوهش‌های قبلی گزارش شده است (Khalil et al., 2021; Mahmoudi et al., 2023).

فعالیت آسکوربات پراکسیداز

بین سطوح کادمیوم و هورمون و برهم­کنش کادمیوم و هورمون از نظر فعالیت آنزیم آسکوربات اکسیداز در سطح یک درصد تفاوت معنی‌داری وجود داشت (جدول 2). میانگین برهم­کنش­ها نشان داد در شرایط عدم حضور کادمیوم بالاترین فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز (75/0 واحد آنزیمی بر میلی‌گرم پروتئین) در شرایط تیمار 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و کمترین آن در تیمار شاهد ( 657 واحد آنزیمی بر میلی‌گرم پروتئین) مشاهده شد. سطوح مختلف هر دو هورمون به طور معنی‌داری فعالیت این آنزیم را بهبود بخشیدند. در تیمار شاهد و در حضور کادمیوم فعالیت آسکوربات پراکسیداز افزایش یافت (15 درصد). از سوی دیگر غلظت­های مختلف هورمونی سبب افزایش فعالیت این آنزیم در حضور کادمیوم شد، به گونه­ای که این افزایش در تیمارهای 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین به ترتیب برابر با 23، 16، 28 و 31 درصد بود و در بین تیمارهای هورمونی تیمار 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین با بیشترین درصد افزایش و بهبود فعالیت این آنزیم دارای کارایی بهتری بودند (شکل 2).

 تحمل به کادمیوم تحت‌تأثیر سالیسیلیک اسید به افزایش فعالیت سیستم دفاعی آنتی‌اکسیدانی نسبت داده می‌شود. در شرایط حضور کادمیوم، این هورمون منجر به مهار گونه­های اکسیژن واکنش­گر و پایداری غشاء می‌شود و تعادل اکسیداسیون-احیا را با تنظیم پاسخ‌های آنتی‌اکسیدانی بهبود می‌بخشد (Popova et al., 2008).

شکل 2- مقایسه میانگین فعالیت آسکوربات پراکسیداز گندم دوروم تحت سطوح مختلف کادمیوم و کاربرد هورمون‌ سالیسیلیک اسید و کینتین. مقادیر میانگین سه تکرار می باشد. حروف غیر مشترک بیانگر تفاوت معنی دار در سطح 5 درصد با استفاده از آزمون دانکن می باشد

Figure 2- Mean comparison for ascorbate peroxidase activity of durum wheat under different cadmium levels and foliar application of salicylic acid and kinetin hormones. Values are the mean of three replicates. Different letters represent significant difference using Dunkan test at 5% probability level.

 

اگرچه در بررسی اثر تنش کادمیوم بر سورگوم مقادیر پر اکسید هیدروژن و غلظت مالون دی آلدئید افزایش یافت، با این حال، تنش کادمیوم سبب کاهش فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی مختلف از جمله پراکسیداز و کاتالاز شد (Hassan et al., 2020). همچنین تأثیر سالیسیلیک اسید بر افزایش فعالیت آنزیم­های آنتی­اکسیدان مانند سوپر اکسید دیسموتاز، پراکسیداز و کاتالاز در سایر پژوهش‌ها نیز گزارش شده است (Kang et al., 2013; Mahmoudi et al., 2023). در حضور کادمیوم افزایش فعالیت آسکوربات پراکسیداز با تیمار هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین در پژوهش‌های قبلی گزارش شده است (Khalil et al., 2021; Mahmoudi et al., 2023).

 

غلظت مالون دی آلدئید

سطوح کادمیوم و هورمون در سطح احتمال یک درصد و برهم­کنش کادمیوم و هورمون در سطح احتمال پنج درصد بر غلظت مالون دی آلدئید معنی‌دار بود (جدول 2). کادمیوم به طور متفاوتی سبب افزایش غلظت مالون دی آلدئید شد و سطوح مختلف هر دو هورمون به طور معنی‌داری غلظت مالون دی آلدئید در حضور کادمیوم را کاهش داد. کادمیوم در تیمار شاهد منجر به افزایش 135 درصدی غلظت مالون دی آلدئید در مقایسه با شرایط بدون کادمیوم شد. از سوی دیگر غلظت­های مختلف هورمون سبب کاهش روند افزایشی غلظت مالون دی آلدئید در حضور کادمیوم شدند، به گونه­ای که این افزایش در تیمارهای 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرومولار کینتین به ترتیب برابر با 65، 84، 138 و 91 درصد بود و تیمارهای 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 75 میکرو‌مولار کینتین دارای کمترین میزان افزایش غلظت مالون دی آلدئید نسبت به شاهد بودند (شکل 3).

شکل 3- مقایسه میانگین غلظت مالون دی آلدهید گندم دوروم تحت سطوح مختلف کادمیوم و کاربرد هورمون‌ سالیسیلیک اسید و کینتین. مقادیر میانگین سه تکرار می باشد. حروف غیر مشترک بیانگر تفاوت معنی دار در سطح 5 درصد با استفاده از آزمون دانکن می باشد.

Figure 3- Mean comparison for malondealdehyde content of durum wheat under different cadmium levels and foliar application of salicylic acid and kinetin hormones. Values are the mean of three replicates. Different letters represent significant difference using Dunkan test at 5% probability level.

 

داده­های این پژوهش نشان دادند میزان پراکسیداسیون لیپیدی که توسط غلظت مالون دی­آلدهید نشان داده می­شود در واکنش به کادمیوم افزایش یافت. افزایش غلظت مالون دی­آلدهید به طور معمول بیانگر تنش اکسیداتیو است. سالیسیلیک اسید با عمل کلات کردن فلزات سنگین مقادیر مالون دی آلدهید را در گیاهان تحت تنش فلز سنگین کاهش می­دهد (Horvath et al., 2002). مشخص شده است که سالیسیلیک اسید با تقویت ظرفیت آنتی‌اکسیدانی منجر به بالارفتن توان سیستم آنتی­اکسیدانی بافت­های گیاهی و نیز سبب کاهش خسارت تنش اکسیداتیو می­شود و در نهایت میزان مالون دی آلدهید را در گیاهان تحت تنش کادمیوم کاهش می­دهد (Zulfiqar et al., 2024).

 

غلظت کادمیوم ریشه

غلظت کادمیوم ریشه تحت تأثیر سطوح مختلف هورمون و کادمیوم در سطح احتمال یک درصد و برهم­کنش کادمیوم و هورمون در سطح احتمال پنج درصد قرار گرفت (جدول 2). تیمار کادمیوم منجر به افزایش شدید غلظت کادمیوم ریشه شد به گونه­ای که بالاترین غلظت کادمیوم ریشه در تیمار 20 میلی‌گرم کادمیوم بر کیلوگرم خاک و 75 میکرو­مولار کینتین (23/58 میلی­گرم بر کیلوگرم) و کمترین آن (1/1 میلی­گرم بر کیلوگرم) در تیمار 400 میکرو­مولار سالیسیلیک اسید و عدم حضور کادمیوم مشاهده شد (شکل 4).

جذب فلزات سنگین به درون سلول­های گیاهی با ویژگی­های ذاتی گیاه مانند ظرفیت حفظ فلزات سنگین در ریشه­ها تنظیم می­شود (Schutzendubel & Polle, 2002). همچنین در این پژوهش، غلظت کادمیوم ریشه چندین برابر غلظت آن در برگ مشاهده شد (شکل‌های 4 و 5). نتایج برهم­کنش سطوح مختلف هورمون و کادمیوم بر غلظت کادمیوم ریشه نشان دادند تیمار کادمیوم به طور متفاوتی سبب افزایش غلظت کادمیوم ریشه شد و سطوح مختلف هورمونی به طور معنی‌داری غلظت کادمیوم ریشه را در حضور کادمیوم کاهش داد. کادمیوم در تیمار شاهد (بدون کاربرد هورمون) سبب افزایش 27 برابری غلظت کادمیوم ریشه در مقایسه با شرایط بدون کادمیوم شد. از سوی دیگر غلظت­های مختلف هورمونی منجر به کاهش روند افزایش غلظت کادمیوم ریشه در حضور کادمیوم شدند، به گونه­ای که این افزایش در تیمارهای 200 و 400 میکرومولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین به ترتیب برابر با 22، 26، 21 و 25 برابر بود و در بین تیمارهای مورد بررسی تیمارهای 200 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 میکرومولار کینتین دارای کمترین غلظت کادمیوم ریشه بودند (شکل 4).

شکل 4- مقایسه میانگین غلظت کادمیوم ریشه گندم دوروم تحت سطوح مختلف کادمیوم و کاربرد هورمون‌ سالیسیلیک اسید و کینتین. مقادیر میانگین سه تکرار می باشد. حروف غیر مشترک بیانگر تفاوت معنی دار در سطح 5 درصد با استفاده از آزمون دانکن می باشد.

Figure 4- Mean comparison for root cadmium concentration of durum wheat under different cadmium levels and foliar applications of salicylic acid and kinetin hormones. Values are the mean of three replicates. Different letters represent significant difference using Dunkan test at 5% probability level.

به عبارتی کاربرد سطوح پائین هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین به طور معنی­داری سبب کاهش تجمع کادمیوم در ریشه شد. به‌طورکلی تمام تیمارهای تنظیم‌کننده‌های رشد در این آزمایش روند کاهش میزان کادمیوم در ریشه را نسبت به تیمار کادمیوم و شاهد نشان دادند. هورمون کینتین با غلظت 50 میکرومولار بیشترین تأثیر را در کاهش جذب کادمیوم ریشه داشت.

افزایش و تجمع کادمیوم با زیادتر شدن میزان این عنصر در محیط  ریشه در پژوهش‌های قبلی گزارش شده است (Larki et al., 2015b Esfandiari et al., 2016;). انباشت کادمیوم در ریشه یکی از سازوکارهای تحمل به فلزات سنگین در برخی گونه­ها از جمله گندم (Larki et al., 2015b) محسوب می­شود و بخش زیادی از کادمیوم جذبی به صورت متصل به دیوارۀ سلولی باقی می­ماند. به تازگی نتایج پژوهش‌ها نشان دادند کاربرد سالیسیلیک اسید به طور قابل توجهی سبب افزایش رسوب کادمیوم در اجزای دیوارۀ سلولی ریشه و بهبود بیوسنتز لیگنین برای تقویت دیواره سلولی شد (Pan et al., 2021). از سوی دیگر توانایی ریشه‌ها برای انباشت کادمیوم جذب شده را می‌توان با سازوکارهای مختلفی بیان کرد. یکی از موارد افزایش میزان کادمیوم در ریشه گیاهان، تجمع آن­ها در واکوئل‌ها است. تجمع این عناصر سبب افزایش غلظت کادمیوم در واکوئل‌های سلولی و جلوگیری از انتقال آن به اندام‌های هوایی می‌شود و به همین علّت و مطابق با نتایج این پژوهش میزان این عنصر در ریشه بیشتر از اندام‌های هوایی است (Larki et al., 2015b).

 

غلظت کادمیوم برگ

غلظت کادمیوم برگ در سطح احتمال یک درصد تحت تأثیر سطوح کادمیوم و هورمون و برهم­کنش سطوح کادمیوم و هورمون قرارگرفت (جدول 2). نتایج برهم­کنش سطوح هورمون و کادمیوم بر غلظت کادمیوم برگ همانند ریشه نشان داد تیمار کادمیوم به طور متفاوتی سبب افزایش غلظت کادمیوم برگ شد و سطوح مختلف هورمونی به طور معنی‌داری غلظت کادمیوم برگ را در حضور کادمیوم کاهش داد، به گونه­ای که بالاترین غلظت کادمیوم ریشه (73/19 میلی­گرم بر کیلوگرم) در تیمار 20 میلی‌گرم کادمیوم بر کیلوگرم خاک و کمترین آن (26/01 میلی­گرم بر کیلوگرم) در تیمار 75 میکرو­مولار کینتین و عدم حضور کادمیوم مشاهده شد (شکل 5).

شکل 5- مقایسه میانگین غلظت کادمیوم برگ گندم دوروم تحت سطوح مختلف کادمیوم و کاربرد هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین. مقادیر میانگین سه تکرار می باشد. حروف غیر مشترک بیانگر تفاوت معنی دار در سطح 5 درصد با استفاده از آزمون دانکن می باشد.

Figure 5- Mean comparison for leaf cadmium concentration of durum wheat under different cadmium levels and foliar applications of salicylic acid and kinetin hormones. Values are the mean of three replicates. Different letters represent significant difference using Dunkan test at 5% probability level.

 

کادمیوم در تیمار شاهد (بدون کاربرد هورمون) سبب افزایش 31 برابری غلظت کادمیوم برگ در مقایسه با شرایط بدون کادمیوم شد. از سوی دیگر غلظت­های مختلف هورمون منجر به کاهش غلظت کادمیوم برگ در حضور کادمیوم شدند، به گونه­ای که این افزایش در تیمارهای 200 و 400 میکرو‌مولار سالیسیلیک اسید و 50 و 75 میکرو‌مولار کینتین به ترتیب برابر با 18، 19، 17 و 20 برابر بود و در بین تیمارهای مورد بررسی تیمارهای 200 میکرومولار سالیسیلیک اسید دارای کمترین غلظت کادمیوم برگ بود (شکل 5). به طور کلی تیمارهای مختلف سالیسیلیک اسید و کینتین در حضور و عدم حضور کادمیوم، انباشت کادمیوم برگ را به طور قابل توجهی کاهش داد. اگرچه سطح دوم سالیسیلیک اسید و کینتین در مقایسه با سطوح اول آن دارای مقادیر بیشتر کادمیوم بودند (شکل 5).

مشخص شده است که با ورود فلزات سنگین به سلول­های ریشه، مقادیری از آن در ریشه باقی می­ماند و بخشی دیگر با جریان تعرق در اندام هوایی تجمع می­یابد (Larki et al., 2015b Esfandiari et al., 2016;). انباشت کادمیوم توسط کمپلکس کادمیوم- فیتوکلاتین در واکوئل سلول­های ریشه می­تواند منجر به تجمع کمتر کادمیوم در برگ­ها شود که این امر صفتی ژنتیکی است و در ژنوتیپ­های گندم ممکن است متفاوت باشد (Stolt et al., 2003). همچنین مطابق با نتایج این پژوهش مشخص شد میزان کادمیوم در بخش هوایی سویا توسط تیمار سالیسیلیک اسید کاهش یافت، ولی در ریشه کاهشی مشاهده نشد (Amooaghaie et al., 2013).

 

فاکتور انتقال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی

بر اساس نتایج تجزیه واریانس تنها سطوح مختلف هورمون در سطح پنج درصد از نظر فاکتور انتقال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی تأثیر معنی‌داری بود (جدول 2). میزان فاکتور انتقال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی ارقام گندم با قرارگرفتن در معرض سطوح مختلف هورمون کاهش یافت، به طوری که بالاترین میزان آن در تیمار شاهد (بدون هورمون) بود، و در چهار تیمار هورمونی 200 و 400 میکرو­مولار سالیسیلیک اسید و 50 و75 میکرومولار کینتین به ترتیب به میزان 21، 24، 24 و 27 درصد کاهش یافت (جدول 3). تفاوت بالای تجمع کادمیوم بین ریشه و اندام­های هوایی گیاهان نشان دهندۀ محدودیت انتقال کادمیوم از ریشه به اندام­های هوایی است، در نتیجه غلظت فلز کادمیوم در ریشه­های گیاهان بیشتر می­باشد (Ali et al., 2012). همچنین تجمع بیشتر کادمیوم در ریشه­های گیاه نسبت به­ اندام هوایی آن­ها می­تواند به ممانعت از سمیّت آن در اندام هوایی در مقایسه با ریشه­های گیاه منجر شود. در این پژوهش، هورمون سالیسیلیک اسید و کینتین با کاهش میزان انتقال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی مانع انتقال آن به اندام هوایی شده و کاهش فاکتور انتقال نشان دهندۀ مقاومت گندم دورم نسبت به فلز کادمیوم با اعمال تیمارهای هورمونی است. 

جمع بندی

با توجه به نتایج حاصل از پژوهش حاضر، چنین استنباط می­شود حضور کادمیوم در خاک صفات فیزیولوژیک و بیوشیمیایی و فاکتورهای مرتبط با رشد را به طور متفاوتی تحت تأثیر قرار داد و منجر به انباشت متفاوت کادمیوم در ریشه و اندام هوایی شد. تیمار کادمیوم سبب کاهش هدایت روزنه­ای، سرعت فتوسنتز، تعرق، شاخص کلروفیل، و فعالیت آنزیم کاتالاز شد ولی سبب افزایش فعالیت آنزیم آسکوربات پراکسیداز، غلظت مالون دی آلدئید، محتوای قندهای محلول و همچنین انباشت کادمیوم در ریشه و برگ پرچم شد. کاربرد هورمون­های سالیسیلیک اسید و کینتین توانست در هر دو شرایط حضور و عدم حضور کادمیوم سبب بهبود صفات فیزیولوژیک و بیوشیمیایی ذکر شده شد و با کاهش فاکتور انتقال کادمیوم از ریشه به اندام هوایی آثار نامطلوب ناشی از حضور کادمیوم را تا حدود زیادی تعدیل نماید. همچنین بر میزان جذب و انباشت کادمیوم تأثیر بگذارد و توزیع و انباشت آن را به ویژه در اندام هوایی کاهش دهد و این امر در راستای دستیابی به هدف کاهش بیشتر غلظت کادمیوم در اندام هوایی و در نهایت دانه­ها و افزایش سلامت آن بود. هورمون­های سالیسیلیک اسید و کینتین با افزایش فعالیت آنزیم­های کاتالاز و آسکوبات پراکسیداز سبب کاهش پراکسیداسیون غشاهای لیپیدی و کاهش خسارت به آن­ها و در نتیجه کاهش محتوای مالون دی آلدئید شد. کاربرد هورمون­های مورد بررسی در حضور کادمیوم همچنین با بهبود هدایت روزنه­ای منجر به بهبود سرعت فتوسنتز و تعرق و نیز کاهش میزان تنش اکسیداتیو و خسارت­های احتمالی ناشی از حضور کادمیوم شد. در بین غلظت­های مورد استفاده هورمون، تیمار 400 میکرومولار سالیسیلیک اسید و 50 میکرومولار کینتین در بیشتر صفات مورد پژوهش دارای کارایی بهتری بودند.

 

سپاسگزاری

 بدین­وسیله نویسندگان از حمایت­های معاونت پژوهش و فناوری دانشگاه شهید چمران اهواز به شماره پژوهانه  SCU.AA400.96 کمال قدردانی را دارند. 

Akbari, M., Firouzabadi, M. B., Asghari, H., Farrokhi, N., & Ghorbani, H. )2013(. Complimentary response of salicylic acid and cadmium on growth and yield traits of soybean. International Journal of Agronomy and Plant Production, 4(7), 1684-1696.  https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20133241193
Ali, H., Naseer, M., & Anwar-Sajad, M. (2012). Phytoremediation of heavy metals by Trifolium alexandrinum. International Journal of Environmental Sciences, 2(3), 1459-1469. https://doi.org/10.6088/IJES.00202030031
Amooaghaie, R., Marefat, E., & Shabani, L. (2013). Interaction of salicylic acid and cadmium on growth, photosynthetic pigments and ion distribution in arial parts of soybean plantlets. Journal of Plant Biological Sciences, 4(14), 75-88. https://ijpb.ui.ac.ir/article_18863.html [In Persian].
Arivazhagan, V., & Sharavanan, P. S. (2015). Effect of cadmium on photosynthetic responses and biochemical contents of maize plants. American Journal of Environmental Engineering and Science, 2(3), 32-36. http://www.openscienceonline.com/journal/ajees
Bayçu, G., Moustaka, J., Gevrek, N., & Moustakas, M. (2018). Chlorophyll fluorescence imaging analysis for elucidating the mechanism of photosystem II acclimation to cadmium exposure in the hyperaccumulating plant Noccaea caerulescens. Materials, 11(12), 2580. https://doi.org/10.3390/ma11122580
Behtash, F., Tabatabai, S., Malakooti, M., Sorouredin, M., & Ustan, S. (2010). Effect of cadmium and silicon on growth and physiological characters of Beta vulgaris. Journal of Agricultural Knowledge, 20(1), 53-67. https://sustainagriculture.tabrizu.ac.ir/article_1401.html [In Persian].
Bears, R. F., & Sizer, I. W. (1952). A spectrophotometric method for measuring the breakdown of hydrogen peroxide by catalase. Journal of Biological Chemistry, 195, 133-140. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)50881-X
Cariny, T. (1995). The Re-Use of Contaminated Land: A Handbook of Risk Assessment. John Wiley and Sons.
Chavoushi, M., Najafi, F., Salimi, A., & Angaji, S. A. (2020). Effect of salicylic acid and sodium nitroprusside on growth parameters, photosynthetic pigments, and secondary metabolites of safflower under drought stress. Scientia Horticulturae, 259, 108823. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.108823.
Chen, X., Ouyang, Y., Fan, Y., Qiu, B., Zhang, G., Zeng, F. (2018). The pathway of transmembrane cadmium influx via calcium-permeable channels and its spatial characteristics along rice root. Journal of Experimental Botany, 69(21), 5279-5291. https://doi.org/10.1093/jxb/ery293
Drazic, G., & Mihailovic, N. )2005(. Modification of cadmium toxicity in soybean seedlings by salicylic acid. Plant Science, 168, 511-517. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2004.09.019
Dobrikova, A. G., & Apostolova, E. L. (2019). Damage and protection of the photosynthetic apparatus under cadmium stress. In Cadmium Toxicity and Tolerance in Plants: From Physiology to Remediation, (pp. 275-298). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814864-8.00011-5
Esfandiari, E., & Rostami, N. (2016). Evaluation of Cd effects on growth and some oxidative stress parameters of wheat cultivars during seedling stage. Journal of Plant Biological Sciences, 8(27), 1-16. https://doi.org/10.22108/ijpb.2016.20690 [In Persian].
Ghosh, M. & Singh, S. P. (2005) A review on phytoremediation of heavy metals and utilization of its byproducts. Applied Ecology and Environmental Research, 3, 1-18.  https://doi.org/10.15666/aeer/0301_001018
Guo, R., Chen, C., He, M., Li, Z., Lv, Y., Tao, X., & Zhang, Q. (2024). Kinetin-mediated reduction of cadmium accumulation in rice (Oryza sativa L.) via modulation of cell wall binding capacity in a no-dependent manner. Environmental and Experimental Botany, 218, 105627. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2023.105627
Guo, B., Liu, C., Li, H., Yi, K., Ding, N., Li, N., Lin, Y., & Fu, Q. (2016). Endogenous salicylic acid is required for promoting cadmium tolerance of Arabidopsis by modulating glutathione metabolisms. Journal of Hazardous Materials, 316, 77-86. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2016.05.032
Hassan, M. J., Raza, M. A., Ur Rehman, S., Ansar, M., Gitari, H., Khan, I., Wajid, M., Ahmed, M., Shah, G. A., Peng, Y., & Li, Z. )2020(. Effect of cadmium toxicity on growth, oxidative damage, antioxidant defense system and cadmium accumulation in two sorghum cultivars. Plants, 9, 1575-1588. https://doi.org/10.3390/plants9111575
Horvath, E., Janda, T., Szalai, G., & Paldi, E. )2002(. In vitro salicylic acid inhibition of catalase activity in maize: differences between the isozymes and a possible role in the induction of chilling tolerance. Plant Science, 163(6), 1129-1135. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(02)00324-2
Ismael, M. A., Elyamine, A. M., Moussa, M. G., Cai, M., Zhao, X., & Hu, C. (2019). Cadmium in plants: uptake, toxicity, and its interactions with selenium fertilizers. Metallomics, 11(2), 255-277. https://doi.org/10.1039/c8mt00247a
Jameson, P. E. (2023). Cytokinin translocation to, and biosynthesis and metabolism within, cereal and legume seeds: Looking back to inform the future. Metabolites, 13(10), 1076. https://doi.org/10.3390/metabo13101076
Kang, G., Li, G., Liu, G., Xu, W., Peng, X., Wang, C., Zhu, Y., & Guo, T. (2013). Exogenous salicylic acid enhances wheat drought tolerance by influence on the expression of genes related to ascorbate glutathione cycle. Biologia Plantarum, 57, 718-724 https://doi.org/10.1007/s10535-013-0335-z
Kaznina, N. M., Titov, A. F., Batova, Y. V., & Laidinen, G. F. (2014). The resistance of plants Setaria veridis (L.) Beauv. to the influence of cadmium. Biology Bulletin of the Russian Academy of Sciences, 41, 428-433. https://doi.org/10.1134/S1062359014050045
Khan, W., Prithiviraj, B., & Smith, D. L. (2003). Photosynthetic responses of corn and soybean to foliar application of salicylates. Journal of plant physiology, 160(5), 485-492. https://doi.org/10.1078/0176-1617-00865
Khalil, R., Haroun, S., Bassyoini, F., Nagah, A., & Yusuf, M. (2021). Salicylic acid in combination with kinetin or calcium ameliorates heavy metal stress in Phaseolus vulgaris plant. Journal of Agriculture and Food Research, 5, 100182. https://doi.org/10.1016/j.jafr.2021.100182
Kumudini, B. S., & Patil, S. V. (2019). Role of plant hormones in improving photosynthesis. Photosynthesis, Productivity and Environmental Stress, 215-240, https://doi.org/10.1002/9781119501800.ch11 
Larki, S., Rahnama, A., & Aynehband, A. (2015a). Effect of application of potassium fertilizers on physiological traits and cadmium accumulation in grain of two durum wheat (Triticum turgidum ssp. Durum (Desf.) Husn.) cultivars. Iranian Journal of Crop Sciences, 17(3), 223-235. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20163334257 [In Persian].
Larki, S., Rahnama, A., & Aynehband, A. (2015b). The effect of potassium on cadmium distribution and accumulation in different t organs of durum wheat. Plant Productions, 38(3), 79-92. https://doi.org/10.22055/ppd.2015.11455 [In Persian].
 Lu, Q., Zhang, T., Zhang, W., Su, C., Yang, Y., Hu, D., & Xu, Q. (2018). Alleviation of cadmium toxicity in Lemna minor by exogenous salicylic acid. Ecotoxicology and Environmental Safety, 147, 500-508. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2017.09.015
Mahmoudi, F., Shikhzadehmosadegh, P., Zare, N., & Esmailpour, B. (2023). Effect of seed pretreatment with salicylic acid on seed germination, growth and biochemical indices of Quinoa seedlings (Chenopodium quinoa willd.) under cadmium stress. Journal of Plant Biological Sciences, 15(1), 1-26. https://doi.org/10.22108/ijpb.2024.138548.1330 [In Persian].
Miladinova, K., Markovska, Y., Tzvetkova, N., Ivanova, K., Geneva, M., & Georgieva, T. (2014). Photosynthesis and growth response of two Paulownia hybrid lines to heavy metals Cd, Pb and Zn. Silva Balcanica, 15, 83-99. https://B2n.ir/u82096
Pan, J., Guan, M., Xu, P., Chen, M., Cao, Z. (2021). Salicylic acid reduces cadmium (Cd) accumulation in rice (Oryza sativa L.) by regulating root cell wall composition via nitric oxide signaling. Science of the Total Environment, 797, 149202. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2021.149202
Paunov, M., Koleva, L., Vassilev, A., Vangronsveld, J., & Goltsev, V. (2018). Effects of different metals on photosynthesis: cadmium and zinc affect chlorophyll fluorescence in durum wheat. International Journal of Molecular Sciences, 19, 787. https://doi.org/10.3390/ijms19030787
Popova, L. P., Maslenkova, L. T., Yordanova, R. Y., Ivanova, A. P., Krantev, A. P., Szalai, G., & Janda, T. (2009). Exogenous treatment with salicylic acid attenuates cadmium toxicity in pea seedlings. Plant Physiology and Biochemistry, 47(3), 224-231. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2008.11.007
Popova, L., Maslenkova, L., Yordanova, R., Krantev, A., Szalai, G., & Janda, T. (2008). Salicylic acid protects photosynthesis against cadmium toxicity in pea plants. General and Applied Plant Physiology, 34(3-4), 133-148. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2008.11.007
Qin, S., Liu, H., Nie, Z., Rengel, Z., Gao, W., Li, C., & Zhao, P. (2020). Toxicity of cadmium and its competition with mineral nutrients for uptake by plants: A review. Pedosphere, 30(2), 168-180. https://doi.org/10.1016/S1002-0160(20)60002-9
Rahnama, A., James, R., Poustini, K., & Munns, R. (2010). Stomatal conductance as a screen for osmotic stress tolerance in durum wheat growing in saline soil. Functional Plant Biology, 37, 255-263. https://doi.org/10.1071/FP09148
Sabella, E., Aprile, A., Tenuzzo, B. A., Carata, E., Panzarini, E., Luvisi, A., De Bellis, L., Vergine, M. (2022). Effects of cadmium on root morpho-physiology of durum wheat. Frontiers in Plant Science, 13, 936020. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.936020 
Schutzendubel, A., & Polle, A. (2002). Plant response to abiotic stresses: heavy metal-induced oxidative stress and protection by mycorrhization. Journal of Experimental Botany, 53(372), 1351-1365. https://doi.org/10.1093/jexbot/53.372.1351 
Sharma, A., Sidhu, G. P. S., Araniti, F., Bali, A. S., Shahzad, B., Tripathi, D. K., Brestic, M., Skalicky, M., & Landi, M. (2020). The role of salicylic acid in plants exposed to heavy metals. Molecules, 25(3), 540. https://doi.org/10.3390/molecules25030540
Smith, I., Vierheller, T. V., & Thorne, C. A. (1988). Assay of glutathione reductase in crude tissue homogenates using 5, 5-Dithiobis (2-nitrobenzoic Acid). Analytical Biochemistry, 175, 408-413. https://doi.org/10.1016/0003-2697(88)90564-7
Sheligl, H. Q. (1986). Die verwertung orgngischer souren durch chlorella lincht. Planta, 47-51. https://doi.org/10.1007/BF01935418
Soltani, A., Robertson, M. J., & Manschadi, A. M. (2006). Modeling chickpea growth and development: Nitrogen accumulation and use. Field Crops Research, 99(1), 24-34. http://dx.doi.org/10.1016/j.fcr.2006.02.006
Stewart, R. C., & Bewley, J. D. (1980). Lipid peroxidation associated with accelerated aging of soybean axes. Plant Physiology, 65, 245-248. http://dx.doi.org/10.1104/pp.65.2.245
Stolt, J. P., Sneller, F. E. C., Bryngelsson, T., Lundborg, T., & Schat, H. (2003). Phytochelatin and cadmium accumulation in wheat. Environmental and Experimental Botany, 49, 21-28. https://doi.org/10.1016/S0098-8472(02)00045-X
Subasic, M., Šamec, D., Selovic, A., & Karalija, E. (2022). Phytoremediation of cadmium polluted soils: Current status and approaches for enhancing. Soil Systems, 6(1), 3. https://doi.org/10.3390/soilsystems6010003
Tassi, E., Pouget, J., Petruzzelli, G., & Barbafieri, M. (2008). The effects of exogenous plant growth regulators in the phytoextraction of heavy metals. Chemosphere, 71(1), 66-73. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2007.10.027  
Vergine, M., Aprile, A., Sabella, E., Genga, A., Siciliano, M., Rampino, P., Lenucci, M. S., Luvisi, A., & Bellis, L. (2017). Cadmium concentration in grains of durum wheat (Triticum turgidum L. subsp. durum). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 65, 6240-6246. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.7b01946 
Vodyanitskii, Y. N. (2016). Standards for the contents of heavy metals in soils of some states. Annals of Agrarian Science, 14, 257-263. https://doi.org/10.1016/j.aasci.2016.08.011 
Wahid, A., Ghani, A., & Javed, F. )2008(. Effect of cadmium on photosynthesis, nutrition, and growth of mungbean. Agronomy for Sustainable Development, 28, 273-280. https://doi.org/0.1051/agro:2008010
Wang, F., Tan, H., Huang, L., Cai, C., Ding, Y., Bao, H., Chen, Z., & Zhu, C. (2021). Application of exogenous salicylic acid reduces Cd toxicity and Cd accumulation in rice. Ecotoxicology and Environmental Safety, 207,111198. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.111198
Zaid, A., Mohammad, F., & Siddique, K. H. M. (2022) Salicylic acid priming regulates stomatal conductance, trichome density and improves cadmium stress tolerance in Mentha arvensis L. Frontiers in Plant Science, 13, 895427. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.895427
Zhang, H., Xu, Z., Guo, K., Huo, Y., He, G., Sun, H., Guan, Y., Xu, N., Yang, W., & Sun, G. (2020). Toxic effects of heavy metal Cd and Zn on chlorophyll, carotenoid metabolism, and photosynthetic function in tobacco leaves revealed by physiological and proteomics analysis. Ecotoxicology and Environmental Safety, 202, 110856.  https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110856
Zulfiqar, A., Gul, B., Saleem, A., Islam, A., Zulfiqar, U., Ali, M. F., Nawaz, M., Al-Ghamdi, A. A., & Rizwana, H. (2024). Salicylic acid mitigates cadmium stress in wheat: Experimental insights into growth and biochemical parameters. Scientifica, 6887694. https://doi.org/10.1155/sci5/6887694